毒害艾美耳球虫初次感染雏鸡免疫器官IL-2和淋巴细胞增殖功能变化 |
| 作者: 郑世民,胡京友,刘晶,高雪丽 |
| 摘要 | |
| 正文 | 字体大小:大 中 小 |
|
毒害艾美耳球虫初次感染雏鸡免疫器官IL-2和淋巴细胞增殖功能变化 郑世民,胡京友,刘晶,高雪丽 (东北农业大学动物医学学院,黑龙江哈尔滨,150030) 摘要: 应用组织匀浆涂片和酸性α-醋酸萘酯酶(ANAE)染色及细胞培养技术和四甲基偶氮唑盐(MTT)测定法对毒害艾美耳球虫(eimeria necatrix, E.necatrix)初次感染雏鸡免疫器官的T细胞百分数、白细胞介素-2 (interleukin-2, IL-2)诱生活性、T和B细胞对ConA或PMA的增殖功能的动态变化进行了较全面系统的研究。结果发现,E.necatrix初次感染雏鸡,其胸腺和脾脏T细胞百分数分别于感染后7~21和7~24天明显高于对照雏鸡;IL-2诱生活性分别于16~18和18~21天较对照雏鸡显著升高; T细胞对ConA的增殖反应分别在14~16和10~18天明显增加。法氏囊和脾脏B细胞对PMA的增殖反应分别于14~24和14~21天显著高于对照雏鸡。表明E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官的IL-2调节及细胞免疫和体液免疫功能均明显提高。 关键词:毒害艾美耳球虫;雏鸡;免疫器官;白细胞介素-2; T、B数量及其增殖功能 Changes of Proliferative Responses and Interleukin-2 Activity of Lymphocytes in Immune Organs of Chickens Primary Infected with E. Necatrix ZHENG Shi-min, HU Jing-you, LIU Jing, GAO Xue-li (College of Animal Medicine, Northeast Agricultural University,Heilongjiang, Harbin, 150030) Abstract:Dynamic changes of percentage of T cell,interleukin-2(IL-2) activity and proliferative response of T and B lymphocytes to concanavalin A(ConA) or phorble myristate acetate(PMA) in immune organs of 14-day-old chickens primary infected with E. necatrix were studied by using acid nonspecific α- naphthyl acetate esterase(ANAE), cellular culture technique and [3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)]-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) method. These results discovered that the IL-2 activity in thymus and spleen of chickens primary infected with E.necatrix was significantly increased compared with that of control, respectively, at day 16-18 and 18-21 post primary infection (PPI), The proliferative responses of T lymphocytes to ConA in thymus and spleen of chickens infected with E. necatrix were significantly elevated compared with control chickens at day 14-16 and 10-18 PPI, respectively. The proliferative responses of B lymphocytes to PMA in spleen and bursa of Fabricius of chickens infected with E. necatrix were significantly higher than that of control at 14-24 and 14-21 PPI, respectively. These results showed that IL-2 immune regulation and function of cellular immune and fluid immune in immune organs of chickens primary infected with E. necatrix had significantly increased. Key words:E. necatrix;chicken;immune organ;IL-2;number and function of T and B cells 鸡球虫病(Coccidiosis)是由艾美耳属(Eimaeia)的一种或几种球虫寄生于鸡肠道黏膜上皮细胞而引起的原虫病[1]。该病是严重危害养鸡业发展的世界性重要肠道寄生虫病之一[2]。对球虫病的防治药物一直占主导地位。近年来,随着耐药球虫株的产生,特别是药物残留对畜产品和人类健康以及环境的影响[3]。寻找控制球虫病的有效途径,已成为广大兽医学工作者探索和关注的热点。根据已有的研究资料,对球虫生活史、流行病学、抗原组分和疫苗研制等研究较多[4],并取得了一定的进展;而对球虫免疫发病机制的研究较少。特别是毒害艾美耳球虫感染雏鸡后,其免疫器官细胞因子免疫调节及其T、B淋巴细胞对ConA或PMA增殖功能的变化,尚未见有研究报道。因此,本项研究对14日龄艾维因2000肉用雏鸡感染毒害艾美耳球虫后,其免疫器官T细胞白IL-2活性和T、B淋巴细胞对ConA或PMA的增殖反应的动态变化进行了全面系统的研究,为进一步研究球虫病的免疫防制提供科学依据。 基金项目:黑龙江省自然科学基金 (C0206) 作者简介:郑世民(1959.9-),男,教授,博士,从事禽病免疫病理研究工作, E-mail: z1.材料与方法 1.1毒害艾美耳球虫(E.necatrix)强毒株 中国农业大学寄生虫教研室惠赠。 1.2主要试剂及生物制剂 刀豆蛋白A(ConA)、RPMI-1640、四甲基偶氮唑盐(MTT)、乙酸豆蔻佛波醇(PMA)、α-甲基-D-甘露糖苷(α-MM)、Hepes等,均购自Sigma公司。 1.3实验动物及其分组和处理 120只1日龄健康艾维因2000肉用商品混合雏鸡,购自哈尔滨市某孵化场,经ND、MD、IBD、CIA及鸡球虫虫卵检查均为阴性,然后在严格消毒无球虫的环境中饲养至14日龄,并随机分为:球虫感染组(I组)和未感染球虫的对照组(C组),每组各60只雏鸡。I组雏鸡于15日龄,经口感染8×103个/只感染性卵囊;C组雏鸡未感染球虫卵囊为对照组。两组雏鸡严格隔离,在相同条件下分别饲养管理。 1.4实验材料采取 分别于感染球虫卵囊后2、4、7、10、14、16、18、21、24、28天,每组随机抽取5只雏鸡,心脏采血处死后,无菌采取胸腺、法氏囊和脾脏,分别制成单细胞悬液,供相应各项免疫指标检测用。 1.5检测指标及方法 1.5.1 胸腺和脾脏T淋巴细胞百分含量测定:采用组织匀浆涂片及酸性α-醋酸萘酯酶(acid nonspecific α- naphthyl acetate esterase ,ANAE)染色法[5]; 1.5.2 胸腺和脾脏IL-2诱生活性及增殖反应: 体外细胞培养和ConA诱生及MTT比色法[6,7]; 1.5.3 法氏囊和脾脏B淋巴细胞增殖反应: 体外细胞培养和PMA诱生及MTT比色法[6,7]。 1.6数据处理 用Minitab软件包进行统计学处理,经t检验分析组间差异, 结果用平均值±标准误表示。 hengshminbl@sohu.com2.结果 2.1 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞IL-2诱生活性的动态变化 表1 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞IL-2诱生活性变化 Table 1 Changes of IL-2 activity of T lymphocytes in immune organs of chickens primary infected with E.necatrix (A590nm) 天数days 7 14 16 18 21 24 胸腺thymus C 0.2401±0.0523 0.2782±0.0518 0.2818±0.0319 0.2871±0.0208 0.2658±0.0306 0.2170±0.0313 I 0.2531±0.0578 0.3011±0.0626 0.3208±0.0211* 0.3918±0.0118** 0.3518±0.0362* 0.2326±0.0226 脾脏spleen C 0.2398±0.0387 0.2757±0.0235 0.2981±0.0215 0.2897±0.0429 0.2718±0.0302 0.2611±0.0610 I 0.2589±0.0564 0.3209±0.0311* 0.3918±0.0103** 0.3578±0.0497* 0.3011±0.0354* 0.2810±0.0513 注:(1)C—对照组;I— 球虫感染组; (2)** p<0.01,* p<0.05;无标记者差异不显著p>0.05。下同。 Note: (1) C— control group I— group infected with E. necatrix;(2) The values with asterisk differ significantly (with single asterisk, p<0.05) or very significantly (with double asterisk, p<0.01) and vise versa. 14日龄雏鸡初次感染E.necatrix后28天内,其胸腺和脾脏T淋巴细胞IL-2诱生活性分别于16~21和14~21天明显高于对照雏鸡(p<0.05或p<0.01);并分别于18和16天达高峰。 2.2 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞数量的动态变化 表2 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞数量变化 Table2 Changes of the number of T lymphocytes in immune organs of chickens primary infected with E.necatrix (Unit:%) 天数days 7 14 16 18 21 24 胸腺thymus C 21.5±2.89 26.7±3.51 31.0±2.65 27.0±1.00 25.0±5.02 29.0±4.36 I 27.5±4.56* 50.4±5.20** 52.7±5.20** 39.3±1.53** 33.3±2.08* 24.3±2.89 脾脏spleen C 20.3±1.53 29.3±2.52 27.0±2.65 24.7±3.94 29.3±4.93 26.7±2.73 I 28.7±4.00* 57.3±4.16** 60.7±3.22** 46.4±2.08** 37.3±2.08* 32.0±3.58* 雏鸡初次感染E.necatrix后,其胸腺和脾脏T淋巴细胞数量分别于感染后7~21和7~24天明显高于对照雏鸡(p<0.05或p<0.01),并于16天达最高峰。其余未见统计学差异。 2.3 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞增殖反应的动态变化 表3 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官T淋巴细胞增殖反应变化 Table3 Changes of proliferative responses of T lymphocytes to ConA in immune organs of chickens primary infected with E. necatrix (A590nm) 天数days 7 14 16 18 21 24 胸腺thymus C 0.1238±0.0166 0.1451±0.0238 0.1162±0.0168 0.1326±0.0178 0.1103±0.0162 0.1020±0.0126 I 0.1401±0.0218 0.2308±0.0418* 0.2798±0.0306** 0.1811±0.2011* 0.1431±0.1865 0.1131±0.0175 脾脏spleen C 0.4368±0.0501 0.4800±0.0521 0.4868±0.0602 0.4301±0.0481 0.4598±0.0526 0.4826±0.0512 I 0.4898±0.0598 0.8801±0.0912** 0.8612±0.0926** 0.6971±0.0721** 0.5602±0.0678* 0.4510±0.0489 14日龄雏鸡初次感染E.necatrix后2~28天,其胸腺和脾脏T细胞增殖反应分别于14~18和10~21天明显高于对照雏鸡(p<0.05或p<0.01),并分别于16和14天达到峰值。 2.4 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官B淋巴细胞增殖反应的动态变化 表4 E.necatrix初次感染雏鸡免疫器官B淋巴细胞增殖反应变化 Table4 Changes of proliferative responses of B lymphocytes to PMA in immune organs of chickens primary infected with E. necatrix (A590nm) 天数days 7 14 16 18 21 24 法氏囊bursa C 0.4712±0.0521 0.5118±0.0589 0.4802±0.0526 0.6012±0.0718 0.5717±0.0686 0.7011±0.0817 I 0.5201±0.0608 0.7126±0.0812* 0.9801±0.1121** 1.1898±0.1157** 1.1021±0.1208** 0.9302±0.1098* 脾脏spleen C 0.4612±0.0578 0.4918±0.0598 0.3942±0.04027 0.5430±0.0621 0.5571±0.6226 0.3690±0.0468 I 0.4696±0.0591 0.6812±0.0768* 0.9801±0.1226** 0.8812±0.0989** 0.7611±0.0829* 0.4208±0.0511 14日龄雏鸡初次感染E.necatrix后2~28天,其法氏囊和脾脏B淋巴细胞增殖反应分别于14~24和14~21天明显高于对照雏鸡(p<0.05或p<0.01),并分别于18和16天达峰值。 3.讨论 3.1 E.necatrix初次感染对鸡IL-2活性变化的影响及其机制 IL-2是主要由T淋巴细胞(CD4+ 和CD8+T细胞)产生的分子质量为15.5kD的糖蛋白,其在动物机体的免疫系统中发挥重要的调节作用,是多种细胞的有效生长因子,包括T细胞的分化、B细胞的增殖、NK细胞的活化等[8]都是在IL-2的调节下完成的。据报道[9],IL-2在抵抗E.tenella和E.acervulina球虫感染中具有十分重要的作用。Miyamoto等[10]研究发现,雏鸡在首次感染E.tenella后7天,其血清IL-2活性明显高于对照雏鸡,且可介导机体对再感染的免疫回忆应答。Li等[11]和Choi等[12]分别用E.tenella和E.acervulin感染雏鸡,结果发现,雏鸡感染E.tenella后,其淋巴细胞培养物上清中IL-2含量显著升高;E.acervulin感染雏鸡,其脾脏和肠内的IL-2 mRNA表达明显增强。表明,E.tenella和E.acervulin感染雏鸡后,可能是通过上调IL-2mRNA的表达水平,介导细胞免疫反应,从而抵抗球虫的再侵袭。而E.necatrix感染雏鸡后,其IL-2活性发生什么样的变化?迄今尚未见有报道。本研究发现,雏鸡初次感染E.necatrix后,其胸腺和脾脏T细胞IL-2活性分别于16~21和14~21天明显高于相应对照雏鸡,提示雏鸡初次感染E.necatrix后一定时段内,IL-2同样发挥十分重要的作用。但是,E.necatrix初次感染雏鸡后,其免疫器官T细胞IL-2活性变化时相与其他艾美耳球虫不同,存在明显滞后现象。产生上述变化是否与E.necatrix在动物体内的发育史、本身的抗原性等有关,尚需进一步实验证实。艾美耳球虫感染雏鸡后,IL-2活性增强,可与其他细胞因子共同作用加速T细胞的早期发育,进而促进Th细胞和CTL细胞的生成,胸腺T细胞IL-2分泌增多,使幼稚T细胞分化为成熟Th细胞、CTL细胞作用增强,脾脏T细胞依赖区的CTL细胞,尤其是Th细胞数量增加,以提高机体细胞免疫功能,进而抵抗球虫的再感染。 3.2 E.necatrix初次感染对鸡淋巴细胞增殖功能变化的影响及其机制 本研究发现,雏鸡初次感染E.necatrix后,其胸腺及脾脏T细胞增殖功能,分别在14~18和10~21天显著高于对照雏鸡,表明细胞免疫与机体抵抗E.necatrix侵袭密切相关。T细胞介导的细胞免疫在抗球虫免疫中处于核心地位。E.necatrix侵入雏鸡肠黏膜上皮细胞后,其子孢子和第一代裂殖子可刺激T细胞活化、增殖、分化为CD4+和CD8+T淋巴细胞。CD4+T细胞是主要诱导群,具有Th细胞功能,识别MHCⅡ类分子相关抗原,通过产生多种细胞因子,如IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-5、IL-6和IL-10,抑制各阶段幼虫在肠道内的寄生,从而参与机体的抗球虫免疫;上述细胞因子又可激活巨噬、LAK及NK等杀伤性细胞,调节免疫应答;也可辅助B细胞和TCR3细胞的免疫应答和细胞毒性反应[13,14]。因此,CD4+T细胞是启动和参与抗球虫免疫应答的重要免疫活性细胞之一,在球虫的保护性免疫中处于主导地位。细胞免疫机制与抗E.necatrix感染密切。但体液免疫在抗球虫中的作用不应被忽视[15],本研究发现,雏鸡初次感染E.necatrix后,其法氏囊和脾脏B细胞增殖功能分别于14~24和14~21天明显高于对照雏鸡,表明雏鸡感染E.necatrix球虫后,其免疫器官的体液免疫功能也增强,细胞免疫和体液免疫两者相互协同,在抗球虫感染中发挥十分重要的作用。 参考文献: [1]索勋, 李国清. 鸡球虫病学[M].北京:中国农业大学出版社,1998 [2] Williams R.B. A compartmentalized model for the estimation of the cost of coccidiosis to the world's chicken production industry [J]. Int. J. Parasitol. 1999,29(8): 1209-1229 [3]马立农,陈杖榴.鸡球虫耐药性的研究进展[J].中国兽药杂志,1999,33(4):47-51 [4]吴绍强,蒋金书,刘群等.鸡球虫疫苗研究进展[J].畜牧兽医学报,2005,36(1):1-5 [5]上海市医学化验所.临床免疫学检验(上册)[M].上海:上海科技出版社,1986 [6] Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays [J]. J Immunol Methods, 1983,65:55-63 [7] 宋卫民,王慧琴. 细胞因子研究方法[M]. 北京:人民卫生出版社,2000 [8] Lillehoj H S, B Kaspers, M C Jenkins, et al. Avian interferon and interleukins-2.A review by comparision with mammalian homologues [J]. Poult. Sci. 1992, 4:67-85 [9] Lillehoj H.S., Xicheng Ding, Marco A. Quiroz, et al. Resistance to intestinal coccidiosis following DNA immunization with the cloned 3-1E eimeria gene plus IL-2, IL-15,and IFN-γ[J]. Avian Dis.2005,49:112-117 [10] Miyamoto T.,Min W.,Lillehoj H.S. Kinetics of interleukin-2 production in chickens infected with Eimeria tenella [J]. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2002, 25(3): 149-158 [11] Li G.X., Lillehoj E.P., Lillehoj H.S. Interleukin-2 Production in SC and TK Chickens Infected with Eimeria tenella[J]. Avian Dis., 2002, 46 (1): 2-9 [12]Choi K.D., Lillehoj H.S. Role of chicken IL-2 on gammadelta T-cells and Eimeria acervulina-induced changes in intestinal IL-2 mRNA expression and gammadelta T-cells[J]. Vet. Immunol. Immunopathol. 2000, 73 (3-4): 309-321 [13] Lillehoj H.S., Lillehoj E.P. Avian coccidiosis. A review of acquired intestinal immunity and vaccination strategies [J]. Avian Dis. 2000, 44(2): 408-425 [14]Arstila T.P., Vainio O, Lassila O. Central role of CD4+ T cells in avian immune response [J]. Poult. Sci.1994, 73(7): 1019-1026 [15] Guo F.C, R.P.Kwakkel, B.A.Williams, et al. Effects of mushroom and herb polysaccharides on cellular and humoral immune responses of eimeria tenella-infected chickens [J]. Poultry Sci. 2004,83:1124-1132 |
|
| 我来说两句 |